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LOS BENEFICIOS DE LA ESPIRULINA AZUL (Arthrospira platensis) EN LA SALUD

LOS BENEFICIOS DE LA ESPIRULINA AZUL (Arthrospira platensis) EN LA SALUD

¿Cómo se diferencia la espirulina azul de la tradicional?. La espirulina azul se extrae de un alga azul-verde, Arthrospira platensis; También se llama extracto de espirulina . Esta alga es más comúnmente conocida como espirulina . Entonces, ¿de dónde proviene el color azul espirulina? La palabra » ficocianina » proviene del griego phyco (algas) y cianina (azul-verde). La ficocianina es un pigmento (pigmento azul de algas) que da a la espirulina un matiz ligeramente azulado. Para hacer la espirulina azul , el antioxidante soluble en agua ficocianina se extrae de la espirulina y luego se comercializa en un polvo azul. La ficocianina sólo se encuentra en la espirulina y algunas otras especies de algas verde-azuladas y es una de las principales diferencias entre la espirulina y otros alimentos verdes como chlorella. Pero además de proporcionar un hermoso color azul, la ficocianina es un poderoso antioxidante.

Química

La espirulina está compuesta de aproximadamente 65% de proteína cruda, altos niveles de vitaminas del complejo B, (8) vitamina E, (9) betacaroteno, (10) y zeaxantina. (4, 11) El contenido de proteína incluye 22 aminoácidos esenciales (2, 12) y la proteína total es nutricionalmente superior a la proteína de la leguminosa, pero inferior a la proteína de la carne (2). Las proteínas C-ficocianina y aloficocianina en la espirulina han sido el foco de mucha investigación (13, 14). Se han desarrollado altos niveles de ácido gamma-linolénico, un ácido graso poliinsaturado (15). Se ha desarrollado un ensayo para lípidos de espirulina utilizando cromatografía líquida de alta presión-espectrometría de masas (16). Los preparados de espirulina contienen de 300 a 400 ppm de hierro (peso seco) y, a diferencia de muchas formas de hierro vegetal, tienen una alta biodisponibilidad cuando son ingeridos por los humanos. Una dosis de 10 g/día puede contener de 1.5 a 2 mg de hierro absorbible, similar a la del sulfato ferroso estándar (17, 18). Los oligoelementos presentes en niveles altos incluyen manganeso, selenio y zinc. El calcio, el potasio y el magnesio también están concentrados en el organismo (19). El espirulano de calcio, un polisacárido sulfatado, se caracterizó a partir de A. platensis (20).

Rinitis alérgica y asma

Los datos experimentales han sugerido que la C-ficocianina puede inhibir selectivamente la liberación de histamina de los mastocitos y prevenir aumentos en la inmunoglobulina E. Un pequeño estudio en pacientes con asma de leve a moderada sugirió que la suplementación con espirulina (1 g/día) produjo mejoría en los parámetros de la función pulmonar (22). Un estudio que evaluó la espirulina en la rinitis alérgica sugirió un efecto positivo en los valores de laboratorio, pero no se reportaron resultados clínicos (23). Un estudio doble ciego controlado con placebo de 6 meses de duración (n = 150) de rinitis alérgica encontró una eficacia superior para la espirulina 2 g/día versus placebo con respecto a las puntuaciones de los síntomas basados en el diario de secreción nasal (24).

Actividad antimicrobiana

Datos in vitro
Se ha sugerido que los cultivos humanos en los que se consumen grandes cantidades de algas tienen niveles más bajos de infección por VIH (25). La espirulina y sus extractos han sido evaluados para determinar su actividad antiviral. Un estudio in vitro encontró que el polisacárido sulfatado calcium spirulan interfirió con la replicación de varios virus envueltos, incluyendo el herpes simple, el citomegalovirus, las paperas, el sarampión, la influenza A y el VIH-1 (20). Otro estudio describió un rango ligeramente diferente de virus susceptibles al extracto (26) La adsorción y penetración del VIH-1 fueron inhibidas por un extracto acuoso de espirulina, y un extracto crudo de agua caliente redujo la replicación del VIH-1.25. Este tipo de actividad in vitro es común a los polisacáridos ácidos de una variedad de fuentes. El enterovirus también es susceptible a la espirulina, y la aloficocianina fue el componente activo (27). La espirulina demostró cierta actividad in vitro contra patógenos bacterianos humanos comunes. La estimulación inmunológica por la ficocianina y los polisacáridos de la espirulina condujo a un efecto antimicótico y antibacteriano en ratones (29).

Antioxidante

Datos experimentales y animales

La proteína espirulina, la ficocianina en forma pura, estaba activa en 4 ensayos diferentes de búsqueda de radicales libres de células; sin embargo, el selenio que contenía la ficocianina era más efectivo (81). En ensayos celulares de actividad antioxidante, 4 preparaciones comerciales de espirulina también estaban activas (82). La suplementación de espirulina en ratas no incrementó los niveles de alfa-tocoferol en el plasma o en el hígado (83). Sin embargo, otro estudio reportó una actividad antioxidante efectiva usando combinaciones de proteína de suero y espirulina (84). La C-ficocianina de la espirulina redujo el estrés oxidativo en hámsteres alimentados con una dieta aterogénica (85). De manera similar, los conejos alimentados con una dieta alta en colesterol fueron protegidos del estrés oxidativo por 4 a 8 semanas de espirulina en la alimentación al 1% ó 5% (86). Un estudio in vitro determinó que tanto la ficocianina como los compuestos bioactivos de la no-ficocianina en un novedoso extracto acuoso de cianofta acuosa a base de A. platensis, contribuyeron a los efectos antioxidantes y antiinflamatorios, sin que se produjeran efectos negativos sobre la coagulación de la sangre. En dosis entre 125 y 500 mcg/mL, hubo más eventos de coágulos, que demostraron ser estadísticamente significativos (p < 0,05) en presencia de ficocianina, no ficocianina y extracto acuoso de cianofta. Sin embargo, la inhibición de la lipoxigenasa se asoció específicamente con los componentes de la no-ficocianina (113).

Cáncer

Datos experimentales y animales

La C-ficocianina mostró una inhibición dependiente de la dosis y del crecimiento y proliferación in vitro de células de leucemia mieloide crónica humana (30, 31). La inducción de apoptosis se consideró uno de los mecanismos implicados (32). Las células de cáncer de hígado HepG2 resistentes a la doxorrubicina fueron inhibidas por la espirulina C-ficocianina a través de un mecanismo apoptótico (33) mientras que los polisacáridos solubles en agua se implicaron como el agente activo contra las células de cáncer de estómago (34). Una combinación de selenio y espirulina inhibió las células de cáncer de mama MCF-7 mediante la detención del crecimiento y la apoptosis (35). Las tasas de supervivencia aumentaron en ratones con cáncer de hígado tratados con C-ficocianina, y se ha informado de regresión tumoral en animales con cáncer oral (36, 37, 38). La activación de las células asesinas naturales antitumorales por la espirulina aumentó la eficacia antitumoral en un modelo de melanoma en ratones B16, y el efecto fue abolido en ratones MyD88 nulos/nulos, lo que indica que la activación de las células NK fue una vía clave (39). En un modelo de carcinogénesis de la bolsa de la mejilla de un hámster, 10 mg/día de extracto de espirulina redujo los cambios displásicos (40), lo que fue confirmado por un estudio inmunohistoquímico (41). La espirulina era quimiopreventiva en un modelo de carcinogénesis de dibutil nitrosamina (42). También indujo la regresión de la lesión en las mascotas con leucoplasia oral en un estudio realizado en la India (43).

Diabetes

Datos del animal

Un estudio en ratas diabéticas inducidas por aloxano reveló que la espirulina a 10 mg/kg por vía oral durante 30 días redujo los niveles de glucosa, mientras que elevó ligeramente la insulina (44)

Hiperlipidemia

Experimentos en ratas sugieren que la C-ficocianina exhibe acción hipocolesterolémica (54). En conejos alimentados con una dieta alta en colesterol, la espirulina (1% ó 5% en la dieta) redujo los triglicéridos séricos, el colesterol total y la lipoproteína de baja densidad (LDL) a las 8 semanas. La lipoproteína de alta densidad (HDL) aumentó notablemente (55).

Efectos del sistema inmunológico

La mayoría de los experimentos in vitro y con animales han sugerido efectos inmunoestimulantes; sin embargo, un estudio encontró que un extracto de espirulina es inmunosupresor (61). Se ha demostrado la activación de monocitos y macrófagos (62, 63) así como el aumento de la producción de interleucina e interferón (64). Los linfocitos epiteliales intestinales de ratones ancianos tratados con espirulina aumentaron en comparación con el grupo de control de edad (65). Un estudio ex vivo de células NK de pacientes sanos tratados con espirulina mostró un aumento de la actividad de NK, lo cual fue confirmado por un segundo estudio en el que los marcadores de células NK y de células T fueron aumentados por espirulina (66).

Prevención de la toxicidad por metales o compuestos orgánicos

Una dieta suplementada con 5% de espirulina previno el hígado graso inducido por tetracloruro de carbono en ratas (68) La toxicidad del cadmio en ratas fue reducida por la espirulina, medida por la histopatología hepática (70). El estrés oxidativo inducido por el cloruro mercúrico en ratones fue bloqueado por la espirulina a 800 mg/kg por vía oral durante 40 días (71). El daño del acetato de plomo en las ratas fue minimizado por la espirulina a través de la normalización de los niveles de plasma y lípidos hepáticos, así como a través de su efecto antioxidante (72). Un extracto de proteína y ficocianina purificada protegieron a las células del neuroblastoma de la toxicidad inducida por el hierro (73). El pretratamiento con espirulina protegió a los ratones contra el daño hepático inducido por el acetaminofeno y la galactosamina (74). Los marcadores de toxicidad de las enzimas hepáticas y renales fueron reducidos por la espirulina después del abuso con el óxido de 4-nitroquinolina 1 a las ratas (75). La espirulina disminuyó la nefrotoxicidad inducida por el cisplatino en las ratas, un efecto atribuido a una acción antioxidante (76). El daño renal inducido por la gentamicina en las ratas fue revertido por la espirulina intraperitoneal de 1 g/kg diariamente
(77). En ratones preñados, la teratogenicidad debida al cadmio se redujo de 125 a 500 mg/kg de espirulina por administración intragástrica durante 17 días de gestación (78).  La mutagenicidad de la ciclofosfamida en ratones pretratados con espirulina se redujo (79).

Dosificación

No hay datos clínicos suficientes para guiar la dosificación de la espirulina para el efecto terapéutico. La espirulina se ha estudiado típicamente en dosis diarias de 1 a 10 g durante 2 a 12 meses (22, 50, 111, 112, 114)

Interacciones

Ninguna bien documentada. Se ha demostrado un efecto antiplaquetario in vitro pero no se ha evaluado clínicamente.91

Reacciones adversas

Existen pocos reportes de reacciones adversas disponibles. Se han publicado informes de casos de inmunoblistering (104) y rabdomiólisis (105) relacionados con la espirulina. Las cianobacterias (algas verde-azules) pueden contener el aminoácido fenilalanina; por lo tanto, las personas con fenilcetonuria deben evitar la espirulina (59. Se ha reportado un caso de hepatotoxicidad asociada a la espirulina (106). Las microcistinas hepatotóxicas y la anatoxina neurotóxica-a son producidas por un número de cianobacterias y se han reportado como contaminantes de espirulina (107, 108). Otros contaminantes incluyen los metales pesados mercurio, cadmio, arsénico y plomo, así como microbios cultivados en desechos animales fermentados (19, 109). Puede haber un potencial de reacciones adversas en personas con trastornos autoinmunes que consumen preparados herbales inmunoestimulantes (110).

Toxicología
La información es limitada. La espirulina se considera no tóxica para los seres humanos en cantidades que normalmente se consumen.

Referencias:

  1. Kulshreshtha A, Zacharia AJ, Jarouliya U, Bhadauriya P, Prasad GB, Bisen PS. Spirulina in health care management. Curr Pharm Biotechnol. 2008;9(5):400-405.18855693
  2. Ciferri O. Spirulina, the edible microorganism. Microbiol Rev. 1983;47(4):551-578.6420655
  3. Ciferri O, Tiboni O. The biochemistry and industrial potential of Spirulina. Annu Rev Microbiol. 1985;39:503-526.3933408
  4. Dillon JC, Phuc AP, Dubacq JP. Nutritional value of the alga Spirulina. World Rev Nutr Diet. 1995;77:32-46.7732699
  5. Robb-Nicholson C. By the way, doctor. I read that spirulina is the next wonder vitamin. What can you tell me about it?Harv Womens Health Watch. 2006;14(3):8.
  6. Godia F, Albiol J, Montesinos JL, et al. MELISSA: a loop of interconnected bioreactors to develop life support in space. J Biotechnol. 2002;99(3):319-330.12385718
  7. Khan Z, Bhadouria P, Bisen PS. Nutritional and therapeutic potential of Spirulina. Curr Pharm Biotechnol. 2005;6(5):373-379.16248810
  8. Lumsden J, Hall DO. Soluble & membrane-bound superoxide dismutases in a blue-green algae (Spirulina) and spinach. Biochem Biophys Res Commun. 1974;58(1):35-41.4364622
  9. Mitchell GV, Grundel E, Jenkins M, Blakely SR. Effects of graded dietary levels of Spirulina maximaon vitamins A and E in male rats. J Nutr. 1990;120(10):1235-1240.2213251
  10. Wang J, Wang Y, Wang Z, et al. Vitamin A equivalence of spirulina beta-carotene in Chinese adults as assessed by using a stable-isotope reference method. Am J Clin Nutr. 2008;87(6):1730-1737.18541562
  11. Kapoor R, Mehta U. Utilization of beta-carotene from Spirulina platensisby rats. Plant Foods Hum Nutr. 1993;43(1):1-7.
  12. Maranesi M, Barzanti V, Carenini G, Gentili P. Nutritional studies on Spirulina maximaActa Vitaminol Enzymol. 1984;6(4):295-304.6442827
  13. Patil G, Chethana S, Madhusudhan MC, Raghavarao KS. Fractionation and purification of the phycobiliproteins fromSpirulina platensisBioresour Technol. 2008;99(15):7393-7396.18295479
  14. Yoshikawa N, Belay A. Single-laboratory validation of a method for the determination of c-phycocyanin and allophycocyanin in Spirulina (Arthrospira) supplements and raw materials by spectrophotometry. J AOAC Int. 2008;91(3):524-529.18567296
  15. Otles S, Pire R. Fatty acid composition of chlorella and spirulina microalgae species. J AOAC Int. 2001;84(6):1708-1714.11767135
  16. Herrero M, Vicente MJ, Cifuentes A, Ibáñez E. Characterization by high-performance liquid chromatography/electrospray ionization quadrupole time-of-flight mass spectrometry of the lipid fraction of Spirulina platensispressurized ethanol extract. Rapid Commun Mass Spectrom. 2007;21(11):1729-1738.17487827
  17. Kapoor R, Mehta U. Iron status and growth of rats fed different dietary iron sources. Plant Foods Hum Nutr. 1993;44(1):29-34.
  18. Kapoor R, Mehta U. Effect of supplementation of blue green algae (Spirulina) on outcome of pregnancy in rats. Plant Foods Hum Nutr. 1993;43(1):29-35.
  19. Johnson PE, Shubert LE. Availability of iron to rats from Spirulina, a blue-green alga. Nutr Res. 1986;6(1):85.
  20. Hayashi T, Hayashi K, Maeda M, Kojima I. Calcium spirulan, an inhibitor of enveloped virus replication, from a blue-green alga, Spirulina platensisJ Nat Prod. 1996;59(1):83-87.
  21. Karkos PD, Leong SC, Karkos CD, Sivaji N, Assimakopoulos DA. Spirulina in clinical practice: evidence-based human applications. Evid Based Complement Alternat Med. 2008 Sep 14 [Epub ahead of print].18955364
  22. Labhe RU, Mani UV, Iyer UM, Mishra M, Jani K, Bhattacharya A. The effect of spirulina in the treatment of bronchial asthma. J Nutraceutical Functional Med Foods. 2001;3(pt 4):53-62.
  23. Mao TK, Van de Water J, Gershwin ME. Effects of a Spirulina-based dietary supplement on cytokine production from allergic rhinitis patients. J Med Food. 2005;8(1):27-30.15857205
  24. Cingi C, Conk-Dalay M, Cakli H, Bal C. The effects of spirulina on allergic rhinitis. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2008;265(10):1219-1223.18343939
  25. Teas J, Hebert JR, Fitton JH, Zimba PV. Algae—a poor man’s HAART?Med Hypotheses. 2004;62(4):507-510.15050097
  26. Hernández-Corona A, Nieves I, Meckes M, Chamorro G, Barron BL. Antiviral activity of Spirulina maxima against herpes simplex virus type 2. Antiviral Res. 2002;56(3):279-285.12406511
  27. Shih SR, Tsai KN, Li YS, Chueh CC, Chan EC. Inhibition of enterovirus 71-induced apoptosis by allophycocyanin isolated from a blue-green alga Spirulina platensisJ Med Virol. 2003;70(1):119-125.12629652
  28. Ozdemir G, Karabay NU, Dalay MC, Pazarbasi B. Antibacterial activity of volatile component and various extracts of Spirulina platensisPhytother Res. 2004;18(9):754-757.15478198
  29. El-Sheekh MM, Mahmoud YA, Abo-Shady AM, Hamza W. Efficacy of Rhodotorula glutinisand Spirulina platensiscarotenoids in immunopotentiation of mice infected with Candida albicansSC5314 and Pseudomonas aeruginosa 35. Folia Microbiol (Praha). 2010;55(1):61-67.20336506
  30. Subhashini J, Mahipal SV, Reddy MC, Mallikarjuna Reddy M, Rachamallu A, Reddanna P. Molecular mechanisms in C-Phycocyanin induced apoptosis in human chronic myeloid leukemia cell line-K562. Biochem Pharmacol. 2004;68(3):453-462.15242812
  31. Li B, Gao MH, Zhang XC, Chu XM. Molecular immune mechanism of C-phycocyanin from Spirulina platensisinduces apoptosis in HeLa cells in vitro. Biotechnol Appl Biochem. 2006;43(pt 3):155-164.
  32. Li B, Zhang X, Gao M, Chu X. Effects of CD59 on antitumoral activities of phycocyanin from Spirulina platensisBiomed Pharmacother. 2005;59(10):551-560.16271846
  33. Roy KR, Arunasree KM, Reddy NP, Dheeraj B, Reddy GV, Reddanna P. Alteration of mitochondrial membrane potential by Spirulina platensisC-phycocyanin induces apoptosis in the doxorubicinresistant human hepatocellular-carcinoma cell line HepG2. Biotechnol Appl Biochem. 2007;47(pt 3):159-167.17274761
  34. Oh SH, Ahn J, Kang DH, Lee HY. The Effect of ultrasonificated extracts of Spirulina maximaon the anticancer activity. Mar Biotechnol (NY). 2011;13(2):205-214.20405153
  35. Chen T, Wong YS, Zheng W. Induction of G1 cell cycle arrest and mitochondria-mediated apoptosis in MCF-7 human breast carcinoma cells by selenium-enriched Spirulina extract. Biomed Pharmacother. 2009 Oct 27 [Epub ahead of print].19926246
  36. Schwartz J, Shklar G. Regression of experimental hamster cancer by beta carotene and algae extracts. J Oral Maxillofac Surg. 1987;45(6):510-515.3108474
  37. Schwartz J, Shklar G, Reid S, Trickler D. Prevention of experimental oral cancer by extracts of Spirulina-Dunaliella algae. Nutr Cancer. 1988;11(2):127-134.
  38. Shklar G, Schwartz J. Tumor necrosis factor in experimental cancer regression with alphatocopherol, beta-carotene, canthaxanthin and algae extract. Eur J Cancer Clin Oncol. 1988;24(5):839-850.
  39. Akao Y, Ebihara T, Masuda H, et al. Enhancement of antitumor natural killer cell activation by orally administered Spirulina extract in mice. Cancer Sci. 2009;100(8):1494-1501.19432881
  40. Grawish ME. Effects of Spirulina platensisextract on Syrian hamster cheek pouch mucosa painted with 7,12-dimethylbenz[a]anthracene. Oral Oncol. 2008;44(10):956-962.18262461
  41. Grawish ME, Zaher AR, Gaafar AI, Nasif WA. Long-term effect of Spirulina platensisextract on DMBA-induced hamster buccal pouch carcinogenesis (immunohistochemical study). Med Oncol. 2010;27(1):20-28.19156551
  42. Ismail MF, Ali DA, Fernando A, et al. Chemoprevention of rat liver toxicity and carcinogenesis by Spirulina. Int J Biol Sci. 2009;5(4):377-387.19521547
  43. Mathew B, Sankaranarayanan R, Nair PP, et al. Evaluation of chemoprevention of oral cancer with Spirulina fusiformisNutr Cancer. 1995;24(2):197-202.8584455
  44. Muthuraman P, Senthilkumar R, Srikumar K. Alterations in beta-islets of Langerhans in alloxan-induced diabetic rats by marine Spirulina platensisJ Enzyme Inhib Med Chem. 2009;24(6):1253-1256.19912059
  45. Mani UV, Desai S, Iyer I. Studies on the long-term effect of spirulina supplementation on serum lipid profile and glycated proteins in NIDDM patients. J Nutraceutical Funct Med Foods. 2000;2(3):25-32.
  46. Parikh P, Mani U, Iyer U. Role of spirulina in the control of glycemia and lipidemia in type 2 diabetes mellitus. J Med Food. 2001;4(4):193-199.12639401
  47. ACSH News & Views. 1982;3(3):3.
  48. FDA Consumer. 1981;15:3.
  49. Voltarelli FA, de Mello MA. Spirulina enhanced the skeletal muscle protein in growing rats. Eur J Nutr. 2008;47(7):393-400.18807105
  50. Simpore J, Kabore F, Zongo F, et al. Nutrition rehabilitation of undernourished children utilizing Spiruline and Misola. Nutr J. 2006;5:3.
  51. Simpore J, Zongo F, Kabore F, et al. Nutrition rehabilitation of HIV-infected and HIV-negative undernourished children utilizing spirulina. Ann Nutr Metab. 2005;49(6):373-380.16219988
  52. Park HJ, Lee YJ, Ryu HK, Kim MH, Chung HW, Kim WY. A randomized double-blind, placebo-controlled study to establish the effects of spirulina in elderly Koreans. Ann Nutr Metab. 2008;52(4):322-328.18714150
  53. Kalafati M, Jamurtas AZ, Nikolaidis MG, et al. Ergogenic and antioxidant effects of spirulina supplementation in humans. Med Sci Sports Exerc. 2010;42(1):142-151.20010119
  54. Nagaoka S, Shimizu K, Kaneko H, et al. A novel protein C-phycocyanin plays a crucial role in the hypocholesterolemic action of Spirulina platensisconcentrate in rats. J Nutr. 2005;135(10):2425-2430.16177207
  55. Cheong SH, Kim MY, Sok DE, et al. Spirulina prevents atherosclerosis by reducing hypercholesterolemia in rabbits fed a high-cholesterol diet. J Nutr Sci Vitaminol (Tokyo). 2010;56(1):34-40.20354344
  56. Khanam A, Rashid H. Effect of spirulina on lipid profile in patients with glomerulonephritis. Bangladesh Renal J. 2001;20:8-13.
  57. Samuels R, Mani UV, Iyer UM, Nayak US. Hypocholesterolemic effect of spirulina in patients with hyperlipidemic nephrotic syndrome. J Med Food. 2002;5(2):91-96.12487756
  58. Lee EH, Park JE, Choi YJ, Huh KB, Kim WY. A randomized study to establish the effects of spirulina in type 2 diabetes mellitus patients. Nutr Res Pract. 2008;2(4):295-300.20016733
  59. Juárez-Oropeza MA, Mascher D, Torres-Durán PV, Farias JM, Paredes-Carbajal MC. Effects of dietary Spirulina on vascular reactivity. J Med Food. 2009;12(1):15-20.19298191
  60. Torres-Duran PV, Ferreira-Hermosillo A, Juarez-Oropeza MA. Antihyperlipemic and antihypertensive effects of Spirulina maximain an open sample of Mexican population: a preliminary report. Lipids Health Dis. 2007;6:33.18039384
  61. Rasool M, Sabina EP. Appraisal of immunomodulatory potential of Spirulina fusiformis: an in vivo and in vitro study. J Nat Med. 2009;63(2):169-175.19093070
  62. Pugh N, Ross SA, ElSohly HN, ElSohly MA, Pasco DS. Isolation of three high molecular weight polysaccharide preparations with potent immunostimulatory activity from Spirulina platensis, Aphanizomen flos-aquae and Chlorella pyrenoidosaPlanta Med. 2001;67(8):737-742.11731916
  63. Balachandran P, Pugh ND, Ma G, Pasco DS. Toll-like receptor 2-dependent activation of monocytes by Spirulina polysaccharide and its immune enhancing action in mice. Int Immunopharmacol. 2006;6(12):1808-1814.17052671
  64. Mao TK, Van de Water J, Gershwin ME. Effect of spirulina on the secretion of cytokines from peripheral blood mononuclear cells. J Med Food. 2000;3(3):135-140.19281334
  65. Hayashi O, Katayanagi Y, Ishii K, Kato T. Flow cytometric analysis of age-related changes in intestine intraepithelial lymphocyte subsets and their functional preservation after feeding mice on spirulina. J Med Food. 2009;12(5):982-989.19857060
  66. Nielsen CH, Balachandran P, Christensen O, et al. Enhancement of natural killer cell activity in healthy subjects by Immulina, a Spirulina extract enriched for Braun-type lipoproteins. Planta Med. 2010;76(16):1802-1808.20560112
  67. Selmi C, Leung PS, Fischer L, et al. The effects of Spirulina on anemia and immune function in senior citizens. Cell Mol Immunol. 2011;8(3);248-254.21278762
  68. Torres-Durán PV, Miranda-Zamora R, Paredes-Carbajal MC, Mascher D, Díaz-Zagoya JC, Juárez-Oropeza MA. Spirulina maximaprevents induction of fatty liver by carbon tetrachloride in the rat. Biochem Mol Biol Int. 1998;44(4):787-793.9584992
  69. Ferreira-Hermosillo A, Torres-Duran PV, Juarez-Oropeza MA. Hepatoprotective effects of Spirulina maximain patients with non-alcoholic fatty liver disease: a case series. J Med Case Reports. 2010;4(1):103.20370930
  70. Karadeniz A, Cemek M, Simsek N. The effects of Panax ginsengand Spirulina platensison hepatotoxicity induced by cadmium in rats. Ecotoxicol Environ Saf. 2009;72(1):231-235.18395256
  71. Sharma MK, Sharma A, Kumar A, Kumar M. Spirulina fusiformisprovides protection against mercuric chloride induced oxidative stress in Swiss albino mice. Food Chem Toxicol. 2007;45(12):2412-2419.17706852
  72. Ponce-Canchihuamán JC, Pérez-Méndez O, Hernández-Muñoz R, Torres-Durán PV, Juárez-Oropeza MA. Protective effects of Spirulina maximaon hyperlipidemia and oxidative-stress induced by lead acetate in the liver and kidney. Lipids Health Dis. 2010;9:35.20353607
  73. Bermejo-Bescós P, Piñero-Estrada E, Villar del Fresno AM. Neuroprotection by Spirulina platensisprotean extract and phycocyanin against iron-induced toxicity in SH-SY5Y neuroblastoma cells. Toxicol In Vitro. 2008;22(6):1496-1502.18572379
  74. Lu J, Ren DF, Wang JZ, Sanada H, Egashira Y. Protection by dietary Spirulina platensisagainst D-galactosamine–and acetaminophen-induced liver injuries. Br J Nutr. 2010;103(11):1573-1576.20102673
  75. Viswanadha VP, Sivan S, Rajendra Shenoi R. Protective effect of Spirulina against 4-nitroquinoline-1-oxide induced toxicity. Mol Biol Rep. 2011;38(1):309-317.20352348
  76. Mohan IK, Khan M, Shobha JC, et al. Protection against cisplatin-induced nephrotoxicity by Spirulina in rats. Cancer Chemother Pharmacol. 2006;58(6):802-808.16552571
  77. Karadeniz A, Yildirim A, Simsek N, Kalkan Y, Celebi F. Spirulina platensisprotects against gentamicin-induced nephrotoxicity in rats. Phytother Res. 2008;22(11):1506-1510.18690652
  78. Paniagua-Castro N, Escalona-Cardoso G, Hernández-Navarro D, Pérez-Pastén R, Chamorro-Cevallos G. Spirulina (Arthrospira) protects against cadmium-induced teratogenic damage in mice. J Med Food. 2011;14(4):398-404.21254891
  79. Chamorro-Cevallos G, Garduño-Siciliano L, Barrón BL, Madrigal-Bujaidar E, Cruz-Vega DE, Pages N. Chemoprotective effect of Spirulina (Arthrospira) against cyclophosphamide-induced mutagenicity in mice. Food Chem Toxicol. 2008;46(2):567-574.17928122
  80. Misbahuddin M, Islam AZ, Khandker S, Ifthaker-Al-Mahmud, Islam N, Anjumanara. Efficacy of spirulina extract plus zinc in patients of chronic arsenic poisoning: a randomized placebo-controlled study. Clin Toxicol (Phila). 2006;44(2):135-141.16615668
  81. Chen T, Wong YS. In vitro antioxidant and antiproliferative activities of selenium-containing phycocyanin from selenium-enriched Spirulina platensisJ Agric Food Chem. 2008;56(12):4352-4358.18522403
  82. Dartsch PC. Antioxidant potential of selected Spirulina platensis preparations. Phytother Res. 2008;22(5):627-633.18398928
  83. García-Martínez D, Rupérez FJ, Ugarte P, Barbas C. Tocopherol fate in plasma and liver of streptozotocin-treated rats that orally received antioxidants and Spirulina extracts. Int J Vitam Nutr Res. 2007;77(4):263-271.18271281
  84. Gad AS, Khadrawy YA, El-Nekeety AA, Mohamed SR, Hassan NS, Abdel-Wahhab MA. Antioxidant activity and hepatoprotective effects of whey protein and Spirulina in rats. Nutrition. 2011;27(5):582-589.20708378
  85. Riss J, Décordé K, Sutra T, et al. Phycobiliprotein C-phycocyanin from Spirulina platensisis powerfully responsible for reducing oxidative stress and NADPH oxidase expression induced by an atherogenic diet in hamsters. J Agric Food Chem. 2007;55(19):7962-7967.17696484
  86. Kim MY, Cheong SH, Lee JH, Kim MJ, Sok DE, Kim MR. Spirulina improves antioxidant status by reducing oxidative stress in rabbits fed a high-cholesterol diet. J Med Food. 2010;13(2):420-426.20210608
  87. Wu LC, Ho JA, Shieh MC, Lu IW. Antioxidant and antiproliferative activities of Spirulina and Chlorellawater extracts. J Agric Food Chem. 2005;53(10):4207-4212.15884862
  88. Deng R, Chow TJ. Hypolipidemic, antioxidant, and antiinflammatory activities of microalgae Spirulina. Cardiovasc Ther. 2010;28(4):e33-e45.20633020
  89. McCarty MF. Clinical potential of Spirulina as a source of phycocyanobilin. J Med Food. 2007;10(4):566-570.18158824
  90. Shyam R, Singh SN, Vats P, et al. Wheat grass supplementation decreases oxidative stress in healthy subjects: a comparative study with spirulina. J Altern Complement Med. 2007;13(8):789-791.17983333
  91. Hsiao G, Chou PH, Shen MY, Chou DS, Lin CH, Sheu JR. C-phycocyanin, a very potent and novel platelet aggregation inhibitor from Spirulina platensisJ Agric Food Chem. 2005;53(20):7734-7740.16190625
  92. Remirez D, González R, Merino N, Rodriguez S, Ancheta O. Inhibitory effects of Spirulina in zymosan-induced arthritis in mice. Mediators Inflamm. 2002;11(2):75-79.
  93. Rasool M, Sabina EP, Lavanya B. Anti-inflammatory effect of Spirulina fusiformison adjuvant-induced arthritis in mice. Biol Pharm Bull. 2006;29(12):2483-2487.17142986
  94. Kumar N, Singh S, Patro N, Patro I. Evaluation of protective efficacy of Spirulina platensisagainst collagen-induced arthritis in rats. Inflammopharmacology. 2009;17(3):181-190.19390977
  95. Gupta S, Hrishikeshvan HJ, Sehajpal PK. Spirulina protects against rosiglitazone induced osteoporosis in insulin resistance rats. Diabetes Res Clin Pract. 2010;87(1):38-43.19896232
  96. Bachstetter AD, Jernberg J, Schlunk A, et al. Spirulina promotes stem cell genesis and protects against LPS induced declines in neural stem cell proliferation. PLoS One. 2010;5(5):e10496.20463965
  97. ALSUntangled Group. ALSUntangled No. 9: Blue-green algae (Spirulina) as a treatment for ALS. Amyotroph Lateral Scler. 2011;12(2):153-155.21323493
  98. Baicus C, Baicus A. Spirulina did not ameliorate idiopathic chronic fatigue in four N-of-1 randomized controlled trials. Phytother Res. 2007;21(6):570-573.17335116
  99. Thaakur S, Sravanthi R. Neuroprotective effect of Spirulina in cerebral ischemia-reperfusion injury in rats. J Neural Transm. 2010;117(9):1083-1091.20700612
  100. Yang L, Wang Y, Zhou Q, et al. Inhibitory effects of polysaccharide extract from Spirulina platensison corneal neovascularization. Mol Vis. 2009;15:1951-1961.19784394
  101. Lu HK, Hsieh CC, Hsu JJ, Yang YK, Chou HN. Preventive effects of Spirulina platensisskeletal muscle damage under exercise-induced oxidative stress. Eur J Appl Physiol. 2006;98(2):220-226.16944194
  102. Qishen P, Guo BJ, Kolman A. Radioprotective effect of extract from Spirulina platensisin mouse bone marrow cells studied by using the micronucleus test. Toxicol Lett. 1989;48(2):165-169.2505406
  103. Klingler W, Kreja L, Nothdurft W, Selig C. Influence of different radioprotective compounds on radiotolerance and cell cycle distribution of human progenitor cells of granulocytopoiesis in vitro. Br J Haematol. 2002;119(1):244-254.12358931
  104. Kraigher O, Wohl Y, Gat A, Brenner S. A mixed immunoblistering disorder exhibiting features of bullous pemphigoid and pemphigus foliaceus associated with Spirulina algae intake. Int J Dermatol. 2008;47(1):61-63.18173606
  105. Mazokopakis EE, Karefilakis CM, Tsartsalis AN, Milkas AN, Ganotakis ES. Acute rhabdomyolysis caused by Spirulina (Arthrospira platensis). Phytomedicine. 2008;15(6-7):525-527.18434120
  106. Iwasa M, Yamamoto M, Tanaka Y, Kaito M, Adachi Y. Spirulina-associated hepatotoxicity. Am J Gastroenterol. 2002;97(12):3212-3213.12492223
  107. Rawn DF, Niedzwiadek B, Lau BP, Saker M. Anatoxin-a and its metabolites in blue-green algae food supplements from Canada and Portugal. J Food Prot. 2007;70(3):776-779.17388076
  108. Jiang Y, Xie P, Chen J, Liang G. Detection of the hepatotoxic microcystins in 36 kinds of cyanobacteria Spirulina food products in China. Food Addit Contam Part A Chem Anal Control Expo Risk Assess. 2008;25(7):885-894.18569007
  109. Wu JF, Pond WG. Amino acid composition and microbial contamination of Spirulina maxima, a blue-green alga, grown on the effluent of fermented animal wastes. Bull Environ Contam Toxicol. 1981;27(2):151-159.6794684
  110. Lee AN, Werth VP. Activation of autoimmunity following use of immunostimulatory herbal supplements. Arch Dermatol. 2004;140(6):723-727.15210464
  111. Grobler L, Siegfried N, Visser ME, Mahlungulu SSN, Volmink J. Nutritional interventions for reducing morbidity and mortality in people with HIV. Cochrane Database Syst Rev. 2013;2:CD004536.2345055410.1002/14651858.CD004536.pub3
  112. Torres-Durán PV, Ferreira-Hermosillo A, Ramos-Jiménez A, Hernández-Torres RP, Juárez-Oropeza MA. Effect of Spirulina maximaon postprandial lipemia in young runners: a preliminary report. J Med Food. 2012;15(8):753-757.22738038
  113. Jensen GS, Attridge VL, Beaman JL, Guthrie J, Ehmann A, Benson KF. Antioxidant and anti-inflammatory properties of an aqueous cyanophyta extract derived from Arthrospira platensis: contribution to bioactivities by the non-phycocyanin aqueous fraction. J Med Food. 2015;18(5):535-541.25764268
  114. Serban MC, Sahebkar A, Dragan S, et al. A systematic review and meta-analysis of the impact of spirulina supplementation on plasma lipid concentrations. Clin Nutr. 2016;35(4):842-851.
  115. Szulinska M, Gibas-Dorna M, Miller-Kasprzak E, et al. Spirulina maxima improves insulin sensitivity, lipid profile, and total antioxidant status in obese patients with well-treated hypertension: a randomized double-blind placebo-controlled study. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2017;21:2473-2481.28617537

 

Fuentes: Drugs.com

 

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